近期对序列文件处理的比較多，时常要看一些核酸序列的反向互补序列，长度。可能的翻译序列。
曾经我常用seqBuider 来查看。假设能在命令行直接查看。想必是极好的。
这是一个perl脚本。只是我把它的运行路径写入环境变量后。就能够当linux命令直接使用了，非常方便的。
这个脚本有四个參数。【-i -r -p -l 】
当中
-i 是必要的參数，用来接收标准输入；
-r 是获得一段序列的反向互补序列（50个字符一行的格式输出）。
-p 是提供一段序列的ORF框架序列，即三种可能的pep翻译（50个字符一行的格式输出）。
-l 获取一段序列的长度。
假设【-r-p-l】都是缺省状态的话。默认三种结果都输出。
在linux配置文件 ~/.bashrc 文件能够写入：
alias tfa=' perl /yourpath/transfa.pl'这样以后在linux命令行运行 tfa 命令，出现：
Usage: tfa <STDIN>[-i-r-p-l]
这种使用提示。
整个代码例如以下：
#! /usr/bin/perl -w
use strict;
use Getopt::Long;
my ($i,$r,$p,$l);
GetOptions(
"i!"=>$i,
"r!"=>$r,
"p!"=>$p,
"l!"=>$l,
);
my $usage = "
Usage: tfa <STDIN>[-i-r-p-l]
";
die "$usage
" unless $i;
print "Please input the nucleotide sequence,and end by ctrl+D.
";
unless($r || $p || $l){
($r,$p,$l)=(1,1,1);
}
my $fa;
do{local $/;chomp($fa=<STDIN>)};
$fa =~ s/s+//g;
die "$usage
" unless $fa;
if($r){
my $faout = reverse_complement($fa);
$faout = out_fasta($faout,50);
print "
###rc###
$faout
";
}
if($p){
my @fa_arr = cds2pep($fa);
print "
###protein###
";
$fa_arr[0] = out_fasta($fa_arr[0],50);
print "ORF1:
$fa_arr[0]
";
$fa_arr[1] = out_fasta($fa_arr[1],50);
print "ORF2:
$fa_arr[1]
";
$fa_arr[2] = out_fasta($fa_arr[2],50);
print "ORF3:
$fa_arr[2]
";
}
if($l){
my $len = length $fa;
print "
###Length###
$len
";
}
#####################
sub out_fasta{
my ($seq,$num) = @_;
my $len = length $seq;
$seq =~ s/([A-Za-z]{$num})/$1
/g;
chop($seq) unless $len % $num;
return $seq;
}
#####################
sub reverse_complement{
my ($seq)=shift;
$seq=reverse$seq;
$seq=~tr/AaGgCcTt/TtCcGgAa/;
return $seq;
}
#####################
sub cds2pep{
my $seq=shift;
##phase0
my $str0 = $seq;
$str0 = trans($str0);
##phase1
my $str1 = substr($seq,1);
$str1 = trans($str1);
##phase0
my $str2 = substr($seq,2);
$str2 = trans($str2);
return ($str0,$str1,$str2);
}
#####################
sub trans{
my $seq = shift;
my $p = code();
my $out;
for(my $i=0;$i<length$seq;$i+=3){
my $codon=uc(substr($seq,$i,3));
last if (length$codon <3);
$out.= exists $p->{"standard"}{$codon} ? $p->{"standard"}{$codon} : "X";
}
return $out;
}
#####################
sub code{
my $p={
"standard" =>
{
'GCA' => 'A', 'GCC' => 'A', 'GCG' => 'A', 'GCT' => 'A', # Alanine
'TGC' => 'C', 'TGT' => 'C', # Cysteine
'GAC' => 'D', 'GAT' => 'D', # Aspartic Aci
'GAA' => 'E', 'GAG' => 'E', # Glutamic Aci
'TTC' => 'F', 'TTT' => 'F', # Phenylalanin
'GGA' => 'G', 'GGC' => 'G', 'GGG' => 'G', 'GGT' => 'G', # Glycine
'CAC' => 'H', 'CAT' => 'H', # Histidine
'ATA' => 'I', 'ATC' => 'I', 'ATT' => 'I', # Isoleucine
'AAA' => 'K', 'AAG' => 'K', # Lysine
'CTA' => 'L', 'CTC' => 'L', 'CTG' => 'L', 'CTT' => 'L', 'TTA' => 'L', 'TTG' => 'L', # Leucine
'ATG' => 'M', # Methionine
'AAC' => 'N', 'AAT' => 'N', # Asparagine
'CCA' => 'P', 'CCC' => 'P', 'CCG' => 'P', 'CCT' => 'P', # Proline
'CAA' => 'Q', 'CAG' => 'Q', # Glutamine
'CGA' => 'R', 'CGC' => 'R', 'CGG' => 'R', 'CGT' => 'R', 'AGA' => 'R', 'AGG' => 'R', # Arginine
'TCA' => 'S', 'TCC' => 'S', 'TCG' => 'S', 'TCT' => 'S', 'AGC' => 'S', 'AGT' => 'S', # Serine
'ACA' => 'T', 'ACC' => 'T', 'ACG' => 'T', 'ACT' => 'T', # Threonine
'GTA' => 'V', 'GTC' => 'V', 'GTG' => 'V', 'GTT' => 'V', # Valine
'TGG' => 'W', # Tryptophan
'TAC' => 'Y', 'TAT' => 'Y', # Tyrosine
'TAA' => 'U', 'TAG' => 'U', 'TGA' => 'U' # Stop
}
## more translate table could be added here in future
## more translate table could be added here in future
## more translate table could be added here in future
};
return $p;
}
__END__